Терморегуляція, дихальний коефіцієнт і активність ключових ферментів антиоксидантної системи в печінці і міокарді щурів при гострому гіпергравітаційному стресі

Рубрика: 
Науки про життя в космосі
Мурадян, XК, Тимченко, АМ, Утко, НО, Бадова, ТО, Безруков, ВВ
Косм. наука технол. 2004, 10 ;(1):099-104
https://doi.org/10.15407/knit2004.01.099
Мова публікації: Російська
Анотація: 
Вивчено вплив м'якої (2g) гіпергравітації різної тривалості на дихальний коефіцієнт, температуру тіла і коефіцієнт теплопровідності, а також активності супероксиддисмутази, каталази, глутатіон-пероксидази і глутатіон-редуктази у печінці та міокарді дорослих щурів. Показано, що м'яка гіпергравітація (2g), модельована центрифугуванням, викликає швидке зменшення температури тіла, яка досягає мінімуму на 2-4-ту год центрифугування і повертається до вихідного рівня протягом наступних 3 год відновлювального періоду. У ті ж строки динаміка коефіцієнт теплопровідності відрізняється змінами протилежної напрямленості – підвищення з наступним відновленням вихідного рівня. Нетривалий сеанс м'якої гіпергравітації (2g, 1 ч) не викликав статистично суттєвих змін активностей вивчених антиоксидантних ферментів. Результати лінійного кореляційного і регресійного аналізів свідчать про наявність додатної кореляційної залежності між температурою тіла і Vo2 на етапах як зменшення, так і відновлення температури. Дихальний коефіцієнт зменшується протягом всього досліджуваного періоду, що може бути наслідком підсилення термогенезу за рахунок переважного окислення жирних кислот. Аналіз отриманого матеріалу за допомогою тривимірного нелінійного плоттингу дозволяє зробити висновок, що до момента завершення центрифугування температура тіла більша для особин, які встигають швидше активувати термогенез за допомогою окисления жирів.
Повний текст (PDF)
 
References: 
1. Timchenko A. N., Mozzhukhina T. G., and Muradian Kh. K. Effect of the Hypergravitational Stress on the Survival, Gas Exchange, Termoregulation, and Synthesis of RNA and Protein in Mice of Different Age, Probl. Staren. Dolgolet., 6 (2), 145—150 (1996) [in Russian].
2. Aebi H. Catalase in vitro. Meth. Enzymol., 105, 121—126 (1984).
3. Balmagia T., Rosovsky S. J. Age-related changes in thermoregulation in male albino rats. Exp. Gerontol., 18 (4), 199—210 (1983).
4. Frolkis V. V., Muradian Kh. K. Life span prolongation, 421 p. (CRC Press, Boca Raton, 1991).
5. Fuller P. M., Jones T. A., Jones S. M., Fuller C. A. Neurovestibular modulation of circadian and homeostatic regulation: vestibiohypothalamic connection? Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 99 (24), 15723—15728 (2002).
6. Fuller P. M., Warden C. H., Barry S. J., Fuller C. A. Effects of 2-G exposure on temperature regulation, circadian rhythms, and adiposity in UCP2/3 transgenic mice. J. Appl. Physiol., 89 (4), 1491 — 1498 (2000).
7. Godin D. V., Garnett M. E. Effects of various anesthetic regimens on tissue antioxidant enzyme activities. Res. Commun. Chem. Pathol. Pharmacol., 83 (1), 93— 101 (1994).
8. Iwasaki K. I., Sasak I., Hirayangi K., Yajima K. Usefulness of daily +2Gz load as a countermeasure against physiological problems during weightlessness. Acta Astronaut., 49 (3—10), 227—235 (2001).
9. Kumei Y., Shimokawa R., Kimoto M., et al. Gravity stress elevates the nociceptive threshold level with immunohistochemical changes in the rat brain. Acta Astronaut., 49 (3—10), 381—390 (2001).
10. Lackner J. R., DiZio P. Artificial gravity as a countermeasure in long-duration space flight. J. Neurosci. Res., 62, 169—176 (2000).
11. Lowry O. H., Rosenbrough N. H., Farr A. L., Randall J. R. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J. Biol. Chem., 193, 265—275 (1951).
12. McCord J. M., Fridovich I. J. M. Superoxide dismutase. An enzymic function for erythrocuprein (hemocuprein). J. Biol. Chem., 244 (22), 6049—6055 (1969).
13. Monson C. B., Horowitz J. M., Horowitz B. A. Core temperature is regulated, although at a lower temperature, in rats exposed to hypergravitic fields. J. Therm. Biol., 13 (3), 93—101 (1988).
14. Paglia D. E., Valentine W. N. Studies on the quantitative and qualitative characterization of erythrocyte glutathione peroxidase. J. Clin. Med., 70, 158—169 (1967).
15. Roos D., Weening R. S., Voetman A. A., et al. Protection of phagocytic leukocytes by endogenous glutathione: studies in a family with glutathione reductase deficiency. Blood, 53, 851—866 (1979).
16. Stein T. F. Space flight and oxidative stress. Nutrition, 18 (10), 867—871 (2002).
17. Wade C. E., Moran M. M., Oyama J. Resting energy expenditure of rats acclimated to hypergravity. Aviat. Space Environ. Med., 73 (9), 859—864 (2002).

18. Young L. R. Artificial gravity consideration for a Mars exploration mission. Annals N. Y. Acad Sci., 871, 367—378 (1999).