Активація пероксидного окислення ліпідів як один з механізмів перебудов в функціонуванні клітин і тканин рослин в умовах мікрогравітації

Рубрика: 
Науки про життя в космосі
Бараненко, ВВ
Косм. наука технол. 2007, 13 ;(2):075-079
https://doi.org/10.15407/knit2007.02.075
Мова публікації: російська
Анотація: 
Активація пероксидного окислення ліпідів (ПОЛ) є універсальним механізмом пошкодження кліткових мембран. Припускається, що і в умовах мікрогравітації цей процес буде діяти під час перебудови тканин рослин. Вивчався перебіг ПОЛ у листках і хлоропластах гороху, а також утворення активних форм кисню, ініціаторів ПОЛ, в умовах 7- і 14-добового клиностатування (2 об/хв). При цьому відзначено підсилене утворення АФК та збільшення інтенсивності ПОЛ, особливо при 14-добовому клиностатуванні. Виявлено збільшення вмісту ненасичених жирних кислот на 7-му добу і незначне зменшення (~ 7 %) – на 14-ту. Швидкість транспорту електронів у хлоропластах зменшилась в обох фотосистемах, особливо у першій на 14-ту добу.
Ключові слова: кліткові мембрани, мікрогравітація, пероксидне окислення ліпідів
 
Повний текст (PDF)
 
References: 
1.  Альбертс Б., Брей Д., Льюис Дж. и др. Молекулярная биология клетки: Пер. с англ. — М.: Мир, 1994.— Т. 1.—415 с.
2.  Мерзляк М. Н. Активированный кислород и окисли­тельные процессы в мембранах растительной клетки // Итоги науки и техники. Сер. физиология растений.— 1989.—6.—167 с.
3.  Мерзляк М. Н, Погосян С. И. Фотодеструкция пигмен­тов и липидов в изолированных хлоропластах // Биол. науки.—1986.—№ 3.—С. 8—20.
4.  Чиркова Т. В., Новицкая Л. О., Блохина О. Б. Пере-кисное окисление липидов и активность антиоксидант-ных систем при аноксии у растений с разной устойчи­востью к недостатку кислорода // Физиол. растений.— 1998.—45, № 1.—С. 65—73.
5.  Asada К. The water-water cycle in chloroplasts: scavenging of active oxygen's and dissipation of excess photons // Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Moll. Biol.—1999.—50.— P. 601—639.
6.  Blokhina О. В., Fagerstedt K. V., Chirkova T. V. Relation­ships between lipid peroxidation and anoxia tolerance in a range of species during post-anoxic reaeration // Physiol. Plantarum.—1999.—105, N 4.—P. 625—632.
7.  Jiao S., Emmanuel H., Guikema J. A. High light stress inducing photoinhibition and protein degradation of photo-system I in Brassica rapa II Plant Sci.—2004.—167, N 4.—P. 733—741.
8.  Henmi Т., Miyao M., Yamamoto Y. Release and reactive-oxygen-mediated damage of the oxygen-evolving complex subunits of PSII during photoinhibition // Plant Cell Physiol.—2004.—45, N 2.—P. 243—250.
9.  Kordyum E. L. Biology of plant cell in microgravity and under clinostating // Intern. Rev. Cytology.—1997.— 171.—P. 1—77.
10.  Liu X., Huang B. Heat stress injury in relation to membrane lipid peroxidation in creeping bentgrass // Crop Science.—2000.—40.—P. 503—510.
11.  Navari-Izzo F., Pinzino C, Quartacci M. F., Sgherri C. L. Superoxide and hydroxyl radical generation and super­oxide dismutase in PSII membrane fragments from wheat // Free Radical Res.—1999.—31.—P. 3—9.

12.  Yamamoto Y. Quality control of photosystem II // Plant and Cell Physiology.—2001.—42, N 2.—P. 121 — 128.